1.待提取样本尽量避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段降解或者DNA得率严重下降；
2.试剂盒中BufferEB中含有少量EDTA，可能影响下游实验，使用时适当稀释，如果用其他洗脱液洗脱，要确保PH>7.5，PH过低影响洗脱效率；
3.离心柱漂洗完成后，尽可能烘干柱膜上残留乙醇，残留乙醇会影响洗脱效率和下游实验效果；如果A260/230值过低，说明样本提取过程中，漂洗不彻底，有盐离子残留，建议增加漂洗次数；
4.对于基因组DNA提取，A260/280值如果低于1.7说明有可能存在蛋白污染，如果值大于1.9，说明可能存在RNA污染；如果洗脱样本时没有使用BufferEB，而使用ddH20，比值或偏低，因为Ph值会影响吸光值，并不表示样本纯度低；
5.对于植物样本，样本处理量无法统一确定，对于一般样本（烟草，拟南芥等），提取量不超过100mg鲜重组织或者20mg干重组织，对于复杂样本（水稻，玉米，榆树等），建议初始样本量不超过50mg鲜重或者10mg干重组织；如果需要较高的DNA量，可以采取多管浓缩的方法提取DNA;
6.对于植物样本，如果短时间不能低温处理，建议使用硅胶颗粒干燥样本，防止DNA严重降解；研磨处理材料过程中尽量不要过量，否则会导致DNA产量低；材料过量也会使样本出现团块无法裂解，导致离心柱堵塞，无法获得高质量DNA;
7.植物组织在降低初始样品量后，仍旧无法改变裂解液体粘稠，离心柱堵塞，DNA得率低，建议使用本公司BufferPL对样本预处理1-3次后在进行提取；
8.对于血液样本，最好使用新鲜血液样本或者4℃存放少于2天的样本，否则会严重降低DNA产量；尽量避免反复冻融（不超过3-5次），每一次冻融都会降低DNA得率；
9.对于血液样本，如果样本中含有血块，说明样本收集时未加入血液抗凝剂；建议重新收集样本并加入EDTA，肝素，柠檬酸等抗凝剂；
10.在使用红细胞裂解液处理血液时，确保血液样本已经恢复到室温状态；处理过程中尽可能混匀样本，防止红细胞裂解不完全；
11.对于细菌样本DNA提取，试剂盒中的溶菌酶可以裂解大部分革兰式阳性细菌，对于特殊细菌如葡萄球菌，需要提高溶菌酶用量（建议10mg/ml溶菌酶使用量增加一倍）和溶葡萄球菌酶（Lysostaphin）共同使用；
12.DNA浓度及纯度判断：[DNA]μg/ml=A260 x稀释倍数x50.0 （50.0：DNA的平均吸收系数）；
